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基于CRISPR/Cas9系统的新一代体外诊断技术

作者:苏州近岸蛋白质科技股份有限公司 2022-09-19T11:35 (访问量:9062)

病原体引起的传染病严重影响人类健康,据统计每年因传染病失去生命的人占总死亡人口的25%。自2020年新冠疫情爆发以来,全世界都笼罩在疫情的阴霾之下。因此在突发性传染病爆发时,能够快速检测识别病原体对遏制疫情扩散与疾病的治疗至关重要[1-3]

 

主流的病原体检测方式大多基于免疫学(如:ELISA)或聚合酶链式反应(PCR)原理,但是在突发性传染病爆发时,制备有效的抗体所需周期较长,而基于PCR的检测手段对设备要求较高,在一些物资匮乏的地区难以第一时间配备设备,错过最佳防控时机[4, 5]

CRISPR技术在作为继ZFN和TALEN之后的第三代基因编辑技术,在各个领域大放异彩。在体外诊断方面由于CRISPR/Cas9系统对靶标序列的精准识别,造就了基于此原理的新型生物传感器优良的检测性能。

基于CRISPR/Cas9系统的分子诊断大致可分为两类,一是基于切割功能的检测方法,另一种是基于定位功能的检测方法。

 

 

(一)基于切割功能的检测手法

NASBA-CRISPR Cleavage(NASBACC)技术

Cas9仅在具有PAM序列的情况下才具有切割能力,而任何随机突变都有48%的概率创造一个新的PAM位点或者破坏现有的PAM位点,因此可以利用特异性的PAM位点来区分菌株的谱系。

NASBA-CRISPR Cleavage(NASBACC)[6]将依赖核酸序列的扩增技术NASBA、toehold开关RNA传感器和CRISPR/Cas9系统进行结合,在特异性PAM序列和gRNA靶点的存在下,NASBA反应合成的双链DNA被Cas9切割,截短的RNA产物中缺少传感器H,所以无法激活toehold开关。而在没有PAM序列的情况下,就可以产生包含传感器H触发序列的全长RNA产物,从而激活传感器H。然后RBS和起始密码子被释放,激活LacZ基因翻译表达β-半乳糖苷酶,该酶可将黄色底物(氯酚红-β-D-吡喃半乳糖苷)转化为紫色产物(氯酚红),从而实现肉眼可见的颜色变化。近岸蛋白的NLS-Cas9 Nuclease(E365)可有效对双链DNA进行切割,适用于体外剪切靶DNA的特异位点。

 

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图1. NASBA-CRISPR 技术检测原理[6]

 

 

CASLFA技术

Wang X等[7]将Cas9介导的检测技术整合至侧流层析试纸条(Lateral flow detection,LFD) ,建立了新型的比色生物传感系统CASLFA (CRISPR/Cas9- mediated lateral flow nucleic acid assay)。在这个体系中,利用生物素标记的引物对靶标DNA进行扩增,将扩增产物添加到反应体系后,Cas9/sgRNA会特异性识别靶标DNA并形成三元复合物。随后将反应底物滴加至侧流层析试纸条上,在毛细作用下,液体不断地向前流动。当复合物流经结合垫时,AuNP-DNA探针会与sgRNA的环状区域结合,形成四元复合物,随后被固定在检测线的链霉亲和素捕获,而过剩的AuNP-DNA会继续向前流动并被质控线上的探针捕获。由于AuNP的积累,会在检测线与质控线上产生颜色带,通过显色即可判断靶DNA是否存在。近岸蛋白的Cas9 (D10A, H840A) Nuclease(E368)在Cas9 Nuclease基础上突变两个切割活性中心,使其只具有靶DNA结合活性,但无切割活性,可有效应用于Cas9/sgRNA与目的DNA的特异性结合。

 

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图2. CASLFA技术检测原理[7]

 

 

CAS-EXPAR技术

Cas9/sgRNA复合物对ssDNA底物进行定点切割,生成产物片段(X)。通过DNA聚合酶催化X与EXPAR模板杂交,得到双链延伸产物。双链产物随后被NEase切割形成缺口,X的一个拷贝被Vent(外)DNA聚合酶从模板上释放出来,解离的X继续触发新一轮的扩增反应[8]。近岸蛋白的Cas9(D10A)Nickase(E366)在Cas9 Nuclease基础上突变其中一个切割活性中心,其能够在与sgRNA靶序列互补的单链DNA上产生切口,从而形成功能性的单链断裂。

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图3. CAS-EXPAR技术检测原理[8]

 

(二)基于定位功能的检测方法

Paired dCas9(PC)技术

Paired dCas9(PC)技术是使用一对dCas9蛋白,分别融合荧光素酶的两个分离结构域(NFluc和CFluc),并通过两个靶向相邻序列的gRNA实现检测。其反应原理如图4所示:当存在靶标DNA时,两个分别带有荧光素酶结构域的dCas9在gRNA的引导下结合到相邻的靶标序列上,荧光素酶的两个分离结构域相互靠近,形成有活性的荧光素酶,在ATP和氧气存在条件下,催化荧光素氧化,生成氧化荧光素,并产生可检测的荧光信号[9]

 

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图4. Paired dCas9(PC)技术原理[9]

 

dCas9/sgRNA-SG I DNA-FISH

Guk K等基于SYBR GREEN I荧光染料开发了dCas9/sgRNA-SG I DNA-FISH系统:即通过设计识别靶标基因的sgRNA序列,dCas9/sgRNA复合物能够特异性识别靶标基因并形成三元复合物。由于dCas9蛋白带有His标签,所以利用anti-His磁珠可以将三元复合物分离,最后加入SYBR GREEN I与体系中的靶标DNA结合实现可视化检测[10]

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图5.dCas9/sgRNA-SG Ⅰ DNA-FISH技术原理[10]

 

 

总结与展望

基于CRISPR/Cas9的新型体外检测手段可以对多种病原微生物进行高效精准检测。相较于传统的检测手段,CRISPR/Cas9类的生物传感器大都不需要大型精密的仪器,对检测场地没有苛刻的要求,大大地降低了检测的成本。除此之外,将CRISPR/Cas9系统与其他技术相结合,也能够大大提高检测的灵敏度与普适性。

基于CRISPR/Cas9的检测手段在一些方面有着巨大优势,但是在病原体检测领域依然有着不可避免的局限性,比如上述的NASBA-CRISPR cleavage技术,Cas9只能对靶标序列进行切割,一旦靶标序列浓度过低,就会由于产物颜色过浅而无法读取准确的实验结果;Cas-EXPAR检测步骤过多,所需试剂过于复杂。虽然该技术正处于起步阶段,全面超越传统的检测方法仍存在一定距离,但随着研究的不断深入,我们有望开发出更多类型的CRISPR/Cas体系,将它们更广泛地应用在病原微生物的检测中。

 

 

参考文献

[1] Broughton J P, Deng X, Yu G, et al. CRISPR-Cas12-based detection of SARS-CoV-2 [J]. Nat Biotechnol, 2020, 38(7): 870-874.

[2] Wang X, Zhong M, Liu Y, et al. Rapid and sensitive detection of COVID-19 using CRISPR/Cas12a-based detection with naked eye readout, CRISPR/Cas12a-NER [J]. Sci Bull (Beijing), 2020, 65(17): 1436-1439.

[3] Smyrlaki I, Ekman M, Lentini A, et al. Massive and rapid COVID-19 testing is feasible by extraction-free SARS-CoV-2 RT-PCR [J]. Nat Commun, 2020, 11(1): 4812.

[4] Lequin R M. Enzyme immunoassay (EIA)/enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) [J]. Clin Chem, 2005, 51(12): 2415-2418.

[5] Li Z, Zhang X, Hu X, et al. Development of an indirect ELISA assay for detecting antibodies against mammalian reovirus in pigs [J]. J Virol Methods, 2018, 262: 61-64.

[6] Pardee K, Green A A, Takahashi M K, et al. Rapid, Low-Cost Detection of Zika Virus Using Programmable Biomolecular Components [J]. Cell, 2016, 165(5): 1255-1266.

[7] Wang X, Xiong E, Tian T, et al. Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats/Cas9-Mediated Lateral Flow Nucleic Acid Assay [J]. ACS Nano, 2020, 14(2): 2497-2508.

[8] Huang M, Zhou X, Wang H, et al. Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats/Cas9 Triggered Isothermal Amplification for Site-Specific Nucleic Acid Detection [J]. Anal Chem, 2018, 90(3): 2193-2200.

[9] Zhang Y, Qian L, Wei W, et al. Paired Design of dCas9 as a Systematic Platform for the Detection of Featured Nucleic Acid Sequences in Pathogenic Strains [J]. ACS Synth Biol, 2017, 6(2): 211-216.

[10] Guk K, Keem J O, Hwang S G, et al. A facile, rapid and sensitive detection of MRSA using a CRISPR-mediated DNA FISH method, antibody-like dCas9/sgRNA complex [J]. Biosens Bioelectron, 2017, 95: 67-71.

 

 

 

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